HAEMOPHILUS DUCREYI: CHARAKTERYSTYKA, HODOWLA, PATOLOGIA - BIOLOGIA - 2026

Haemophilus ducreyi to Gram-ujemna bakteria coccobacillary, która wywołuje chorobę przenoszoną drogą płciową, zwaną wrzodem miękkim, wrzodem wrzodowym lub chorobą Ducrey'a. Ta patologia charakteryzuje się pojawieniem się wrzodziejących zmian zlokalizowanych na poziomie okołoporodowym i okołoodbytniczym.

Choroba jest rozpowszechniona na całym świecie i występowała endemicznie do XX wieku. Szczególnie w czasie wojny choroba ta była równie ważnym problemem zdrowotnym jak rzeżączka.

Agar czekoladowy z koloniami z rodzaju Haemophilus

Obecnie częściej diagnozuje się go na Karaibach, w Afryce i Azji, gdzie jest przyczyną 23–56% owrzodzeń w okolicy narządów płciowych. Istnieją również sporadyczne ogniska w Stanach Zjednoczonych i Kanadzie.

Według danych Światowej Organizacji Zdrowia (WHO), częstość występowania szacuje się na 6 do 7 milionów przypadków rocznie na całym świecie. Wiadomo jednak, że istnieją zapisy podrzędne, ze względu na czasami trudność w potwierdzeniu diagnozy.

Stwierdzono, że częstość występowania była wyższa u par heteroseksualnych niż homoseksualnych, gdzie prawdopodobieństwo zarażenia przy pojedynczej ekspozycji seksualnej wynosi 0,35%.

Dlatego, jak każda choroba przenoszona drogą płciową, często obserwuje się ją u osób rozwiązłych, takich jak prostytutki. Podobnie, niektóre badania mówią, że infekcja występuje częściej u nieobrzezanych mężczyzn i jest bardziej związana z rasą czarną niż białą.

Z drugiej strony, w krajach słabo rozwiniętych zmiany wrzodowe są uważane za czynnik ryzyka nabycia ludzkiego wirusa niedoboru odporności (HIV) u osób heteroseksualnych, przy czym wrzodziejące zmiany służą jako brama dla wirusa.

Charakterystyka ogólna

Gromada: Proteobacteria

Klasa: Gammaproteobacteria

Zamówienie: Pasteurellales

Rodzina Pasteurellaceae

Rodzaj: Haemophilus

Gatunek: ducreyi

Morfologia

Haemophilus ducreyi w barwieniu metodą Grama w próbkach bezpośrednich jest obserwowany jako Gram-ujemne coccobacilli, które słabo pobierają barwnik.

Bakteriom zwykle towarzyszą liczne komórki polimorfojądrowe.

Podobnie bakterie Gram są charakterystycznie ułożone w luźne skupiska (podobne do ławic ryb) lub jako skupiska delikatnie zakrzywionych równoległych łańcuchów, symulując tor kolejowy.

Wyizolowane coccobacilli można również znaleźć na zewnątrz lub wewnątrz komórek polimorfojądrowych.

Na poziomie hodowli kolonie Haemophilus ducreyi są zwykle małe, nie śluzowate, o kolorze od szarego do jasnożółtego.

Dotykane platynową rączką mogą ślizgać się po agarze, co jest trudne do zniesienia, a przy próbie rozpuszczenia ich w roztworze fizjologicznym tworzą niejednorodną „grudkowatą” zawiesinę.

Na agarze z krwią kolonie prezentują wokół siebie niewielką strefę hemolizy.

Patogeneza i patologia

Okres inkubacji jest krótki, zwykle od trzech do siedmiu dni, bez objawów zwiastujących.

Zmiana zaczyna się jako grudka, początkowo z rumieniową i obrzękową obwódką; po dwóch do trzech dniach tworzy się krosta. Te zmiany (grudka i krosta) nie są bolesne.

Później zaczyna się tworzenie miękkiego wrzodu, który ma nieokreślone granice. Zmiany charakteryzują się postrzępionymi owrzodzeniami, z nekrotycznym i ropnym wysiękiem o żółtawo-szarym kolorze, bardzo bolesnym.

Często stwierdza się liczne zmiany chorobowe z powodu autoinokulacji w bardzo bliskiej odległości od siebie.

Wrzody wrzodowe mają bardzo kruchą podstawę utworzoną przez mocno unaczynioną ziarninę, dlatego łatwo krwawią. Te zmiany, jeśli nie są leczone, mogą utrzymywać się przez miesiące.

U pacjenta występuje powiększenie węzłów chłonnych pachwinowych, zwykle jednostronne, tkliwe w badaniu palpacyjnym. Następnie przechodzi do fluktuacji dymienicy pachwinowej, która może spontanicznie drenować.

Kobiety mogą rzadziej odczuwać limfadenopatię i dymienie, ale zamiast tego mogą zgłaszać inne objawy kliniczne, takie jak: białaczka, lekkie krwawienie, dyzuria, częste oddawanie moczu i dyspareunia.

Lokalizacja obrażeń

Najczęstszą lokalizacją zmian u mężczyzn jest prącie (napletek, wędzidełko, żołądź, bruzda czołowa i żołędziowo-napletkowa).

U kobiet mogą znajdować się na wargach narządów płciowych, kroczu, wejściu do pochwy, przedsionku, ścianach pochwy, szyjce macicy i okolicy odbytu.

U kobiet opisywano również przypadki pozagenitalne z powodu autoinokulacji piersi, palców, bioder i błony śluzowej jamy ustnej.

Natomiast u homoseksualistów mogą pojawić się na penisie (w tych samych miejscach) oraz w okolicy odbytu.

Rodzaje urazów

Zmiany mogą występować na różne sposoby, co utrudnia diagnozę, dlatego też diagnostyka różnicowa musi być przeprowadzona z innymi chorobami przenoszonymi drogą płciową.

Olbrzymie wrzody

Są to te, które mierzą więcej niż 2 cm.

Serpeginous wrzody

Utworzony przez połączenie małych wrzodów.

Wrzody pęcherzykowe

To te, które pochodzą z mieszka włosowego.

Wrzody karłowate

Mają od 0,1 do 0,5 cm długości, są okrągłe i płytkie. Są mylone ze zmianami opryszczkowymi i wyróżniają się nieregularną podstawą i spiczastymi krwotocznymi krawędziami.

Przemijający wrzód

Ma szybką ewolucję od 4 do 6 dni, a następnie zapalenie węzłów chłonnych. Ten typ owrzodzenia jest mylony z limfogranuloma wenerycznymi.

Chancroid grudkowy

Ten typ zmiany zaczyna się jako grudka, a następnie owrzodzi, jego brzegi unoszą się, przypominając zmiany kłykcin kończystych i kiły wtórnej.

Diagnoza

Próbowanie

Próbkę należy pobrać z dna i dokładnie zdezynfekować podcięte krawędzie owrzodzenia za pomocą wacików bawełnianych, sztucznego jedwabiu, dakronu lub alginianu wapnia.

Można także hodować aspiraty Bubo. Jednak idealną próbką jest wrzód, ponieważ to tam najczęściej znajduje się żywy mikroorganizm.

Ponieważ próbki mają zwykle małą liczbę Haemophilus, a jednocześnie nie przeżywają długo poza organizmem, zaleca się natychmiastowe zasianie ich bezpośrednio w pożywce hodowlanej.

Media kulturowe

Ogólnie do uprawy Haemophilus wymagane są odżywcze pożywki hodowlane o specjalnych właściwościach, ponieważ ten rodzaj jest bardzo wymagający z żywieniowego punktu widzenia. Haemophilus ducreyi nie wymyka się temu.

Do izolacji H. ducreyi z powodzeniem użyto pożywki składającej się z agaru GC z 1 do 2% hemoglobiny, 5% płodowej surowicy cielęcej, 1% wzbogacenia IsoVitalex i wankomycyny (3 µg / ml).

Innym użytecznym podłożem jest podłoże przygotowane z agarem Müeller Hinton Agar z 5% podgrzaną krwią końską (czekolada), 1% wzbogaceniem IsoVitalex i wankomycyną (3 µg / ml).

Warunki wzrostu

Pożywki inkubuje się w 35 ° C w 3 do 5% CO2 (mikroerofilia), przy wysokiej wilgotności, obserwując płytki codziennie przez 10 dni. Zazwyczaj kolonie rozwijają się w ciągu 2 do 4 dni.

ID

Do identyfikacji wykorzystywane są systemy półautomatyczne lub zautomatyzowane, takie jak system RapIDANA (bioMerieux Vitek, Inc).

Inne metody diagnostyczne

Stosuje się także przeciwciała monoklonalne skierowane przeciwko H. ducreyi, wykorzystując pośredni test immunofluorescencyjny do wykrywania organizmu w rozmazach z owrzodzeń narządów płciowych.

Również dzięki testom biologii molekularnej, takim jak PCR, są one najbardziej czułe.

Leczenie

Istnieje kilka schematów leczenia, wszystkie bardzo skuteczne. Pomiędzy nimi:

• Ceftriakson, pojedyncza dawka domięśniowa 250 mg.
• Azytromycyna, pojedyncza dawka 1 g.
• Ciprofloksacyna, 500 mg co 12 godzin przez trzy dni.
• Erytromycyna, 500 mg co 6 do 8 godzin przez siedem dni.

Bibliografia

1. Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. (2004). Diagnoza mikrobiologiczna. (Wyd. 5). Argentyna, od redakcji Panamericana SA
2. Forbes B, Sahm D, Weissfeld A (2009). Diagnoza mikrobiologiczna Bailey & Scott. 12 ed. Argentyna. Od redakcji Panamericana SA;
3. Ryan KJ, Ray C. 2010. Sherris. Medical Microbiology, 6. wydanie McGraw-Hill, Nowy Jork, USA
4. Moreno-Vázquez K, Ponce-Olivera RM, Ubbelohde-Henningsen T. Chancroide (choroba Ducreya). Dermatol Rev Mex 2014; 58: 33-39
5. Współtwórcy Wikipedii. Haemophilus ducreyi. Wikipedia, wolna encyklopedia. 26 kwietnia 2018, 23:50 UTC. Dostępne pod adresem: en.wikipedia.org
6. WL Albritton. Biologia Haemophilus ducreyi. Microbiol Rev. 1989; 53 (4): 377-89.
7. González-Beiras C, Marks M, Chen CY, Roberts S, Mitjà O. Epidemiology of Haemophilus ducreyi Infections. Emerg Infect Dis. 2016; 22 (1): 1-8.
8. Diagnostyka laboratoryjna Haemophilus ducreyi. Czy J Infect Dis Med Microbiol. 2005; 16 (1): 31-4.