Badanie kału jest badaniem laboratoryjnym, w którym bada się stolec (kał) w celu wykrycia pasożytów jelitowych. Jest to jedna z najprostszych i najstarszych technik laboratoryjnych, początkowo opracowana przez Antona Van Leeuwenhoeka w XVIII wieku.
Anton Van Leeuwenhoek, uważany za ojca mikrobiologii, zastosował „bezpośrednią” metodę koproparazytoskopową do obserwacji własnych odchodów i opisał, które lata później zostały zidentyfikowane jako trofozoity Giardia lamblia, pierwotniaka atakującego jelito cienkie człowieka.
Forma dla dorosłych Ascaris lumbricoides (źródło: Wikimedia Commons)
Choroby pasożytnicze dotykają miliony ludzi na świecie, zwłaszcza w krajach biednych lub słabo rozwiniętych, gdzie panują złe warunki sanitarne związane z usuwaniem odchodów i spożywaniem zanieczyszczonej wody.
Rozpoznanie tych schorzeń jest ważne dla prawidłowego leczenia, gdyż badanie koproparazytoskopowe jest w tym nieodzownym narzędziem. To proste, szybkie i niedrogie badanie laboratoryjne.
Badanie kału obejmuje kilka technik, które oprócz umożliwienia bezpośredniej wizualizacji i oceny ilościowej jaj, trofozoitów, cyst lub larw, umożliwiają identyfikację struktur mikroorganizmu, a tym samym identyfikację pasożyta.
Techniki stosowane do badań koproparazytoskopowych obejmują techniki barwienia błękitem metylenowym, metody koncentracji, technikę Fausta, Richiego, techniki sedymentacyjne oraz badania bezpośrednie, pojedyncze lub seryjne.
Niezapłodnione jajo Ascaris lumbricoides. (Źródło: Centers for Disease Control and Prevention, za pośrednictwem Wikimedia Commons).
Próbowanie
Aby przeprowadzić to badanie, pacjentka musi pobrać świeżą próbkę stolca, która nie jest zanieczyszczona moczem, wodą, krwią (miesiączką) ani ziemią. Próbka musi mieć wielkość orzecha włoskiego lub, jeśli jest płynna, musi mieć co najmniej objętość odpowiadającą dwóm łyżkom stołowym.
Pacjent nie może przyjmować leków pasożytobójczych przez co najmniej trzy dni przed pobraniem próbki lub przez okres wskazany przez lekarza. Nie należy też stosować środków przeczyszczających.
Próbki należy umieszczać w suchym pojemniku z pokrywą z szeroką szyjką lub specjalnie zaprojektowanym pojemniku jednorazowym (dostępnym w preferowanej aptece). Próbki należy umieścić w chłodnym miejscu, nie przechowywać w lodówce dłużej niż 24 godziny i nie należy przechowywać w pobliżu źródeł ciepła ani zamrażać.
Gdy wskazane badanie jest seryjne, wymagane są co najmniej trzy próbki, które należy pobierać co 24 godziny lub dłużej, zgodnie z zaleceniami lekarza. W takich przypadkach laboratoria zazwyczaj zapewniają zestaw kolb zawierających roztwory z konserwantami.
Gdy pacjent zauważy w kale „robaka”, o ile to możliwe, powinien umieścić go w zamkniętej butelce z wodą i zabrać do laboratorium razem z butelką z próbką kału.
Fiolki z próbkami lub „robakami” muszą być oznakowane i oznaczone imieniem i nazwiskiem pacjenta, jego wiekiem, płcią oraz datą i godziną pobrania próbki.
Bardzo ważne jest, aby odpowiednio poinstruować pacjenta o wszystkich tych aspektach pobierania próbek i obchodzenia się z nimi, ponieważ od tego zależy, czy elementy, które mogą występować we wspomnianej próbce, pozostaną zdolne do obserwacji, identyfikacji i diagnozy.
Techniki
Istnieją bezpośrednie badania koproparazytoskopowe oraz techniki zawieszania i zatężania próbek, które są używane wielokrotnie, aby uniknąć fałszywie ujemnych wyników i obserwować znacznie czystsze próbki. Do identyfikacji niektórych pasożytów stosuje się również niektóre techniki barwienia.
Egzaminy bezpośrednie
Bezpośrednie badanie kału metodą kropli oczekujących polega na rozcieńczeniu próbki kału roztworem fizjologicznym (0,9% NaCl) i umieszczeniu kropli tego roztworu we wklęsłości, która posiada specjalnie użyty preparat. w tym celu.
Po umieszczeniu kropli na szkiełku nakrywa się szkiełko nakrywkowe i obserwuje pod mikroskopem. Technika ta pozwala nam obserwować jaja i cysty, ale pozwala też na obserwację dowolnego elementu ruchomego, takiego jak wiciowce, larwy, trofozoity, orzęski itp.
Techniki zawieszania i koncentracji
Techniki zawiesinowe wykorzystują roztwór, który jest gęstszy niż obserwowane pierwiastki, dzięki czemu unoszą się one na powierzchni cieczy i mogą zostać zebrane, ponieważ pozostają skoncentrowane w powierzchniowej warstwie roztworu.
Ta technika ma tę zaletę, że pozwala na uzyskanie dość czystej próbki zanieczyszczeń, ponieważ te, które są bardziej gęste, pozostają na dnie butelki. Względną wadą jest to, że roztwór kurczy się i deformuje mikroorganizmy w krótkim czasie.
Metody te nie są stosowane do jaj robaków pasożytniczych i tasiemców, ponieważ są one bardzo ciężkie i nie unoszą się w takich roztworach. Są szeroko stosowane do obserwacji pierwotniaków w ich postaci tropozoicznej lub w ich jajach oraz do obserwacji larw, takich jak Strongyloides stercoralis.
Inną szeroko stosowaną techniką, ponieważ nie powoduje deformacji mikroorganizmów w próbce, jest prosta i niedroga, jest technika sedymentacji formaliny.
Przykłady technik koncentracji obejmują techniki Fausta i Richiego.
Różne techniki, które umożliwiają mikroskopową wizualizację jaj, larw lub innych elementów różnych pasożytów jelitowych, w połączeniu z technikami barwienia, pozwalają na identyfikację i diagnostykę tych chorób.
Przykłady
Następnie opisano przypadek kliniczny i pokazano kilka obrazów ilustrujących przydatność badania kału w diagnostyce i ocenie korzyści z leczenia.
Jajo Trichuris trichuria (Źródło: CDC / Dr. Mae Melvin, dzięki uprzejmości: Public Health Image Library za pośrednictwem Wikimedia Commons)
18-letni pacjent zgłosił się do gabinetu lekarskiego z powodu kolkowego bólu brzucha, nasilającego się w okolicy pępka, nudności i epizodów wodnistej biegunki.
Podczas przesłuchania pacjenta lekarz zwrócił uwagę na dwa istotne punkty: 1) pacjent zgłosił kąpiel w jeziorze na wsi i 2) uderzył go fakt, że jego stolec unosił się w toalecie. Po zbadaniu pacjenta lekarz podejrzewa obecność Giardia lamblia.
Cykl życia Giardia lamblia (Źródło: LadyofHats via Wikimedia Commons)
Ten pierwotniak przebywa w jelicie cienkim człowieka i utrudnia wchłanianie tłuszczów, co powoduje powstawanie bardzo tłustych stolców, które mają tendencję do unoszenia się na wodzie. Zanieczyszczenie często występuje w zanieczyszczonej wodzie w jeziorach lub strumieniach na obszarach wiejskich lub w źle utrzymanych basenach lub wannach z hydromasażem.
Giardia lamblia trophozoites (źródło: fot. Eva Nohýnková, Katedra Medycyny Tropikalnej, I Wydział Lekarski Uniwersytetu Karola w Pradze i Szpital Bulovka, Republika Czeska) Zdjęcie w artykule Marie Lipoldova, Laboratorium Immunologii Molekularnej i Komórkowej, Instytut Molekularny Genetics, Academy of Sciences of the Czech Republic, Prague, Czech Republic via Wikimedia Commons)
Lekarz zleca badanie kału, a wyniki potwierdzają obecność Giardia lamblia. Po zakończeniu leczenia wskazane jest ponowne badanie kału potwierdzające brak cyst lub trofozoitów Giardia lamblia.
Bibliografia
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Częstość występowania strongyloidiozy w Ameryce Łacińskiej: systematyczny przegląd literatury. Epidemiology & Infection, 143 (3), 452-460.
- przez Haro Arteaga, I. i Ruiz, AEC (2014). Diagnoza. Parazytologia medyczna (4a, 347.
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D. i Cordovi, RA (2003). Przydatność 2 metod koproparazytologicznych i ich wykorzystanie w badaniu przeciwgrzybiczym. Cuban Journal of Tropical Medicine, 55 (3), 174-178.
- Cena, -DL (2017). Instrukcja postępowania w diagnostyce pasożytów jelitowych. CRC Press.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M., & Orhan, R. (1984). Badanie kopro-parazytologiczne na zapaśnikach reprezentacji narodowej. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114–118.